Introducción
n= 10 talleres, 45 certificados emitidos
La Asociación Hondureña de Parasitología (AHPA), en conjunto con el Instituto Antonio Vidal (IAV) y el Servicio de Parasitología, Hospital Escuela, Tegucigalpa, Honduras, está desarrollando una serie de talleres para fortalecer el diagnostico parasitológico orientado a personal de laboratorio del Hospital Escuela y otras instituciones de Salud Pública, en el marco del Consorcio The Global Health Network Latinoamérica y el Caribe (TGHN LAC). Estas actividades iniciaron en el año 2024 y se continúa en el año 2025 desarrollando una serie de talleres de 4 temáticas para un grupo de participantes. Durante el periodo de agosto a noviembre de 2025 se desarrollaron n= 10 talleres.
Objetivo General
Fortalecer el diagnostico de parasitosis causadas por amebas, protozoos Apicomplexa intestinales, helmintos y malaria entre personal de laboratorio del Hospital Escuela e instituciones afines (Hospital San Felipe, Centro Integral de Salud Alonzo Suazo, Laboratorio Nacional, Instituto Hondureño de Seguridad Social e Instituto Nacional Cardiopulmonar El Tórax)
Resultados Esperados
Esta serie de talleres busca generar un cambio positivo en la capacidad diagnóstica del Hospital Escuela mediante la formación continua del personal de laboratorio. Asimismo, se espera fomentar el trabajo en equipo, la participación activa y el compromiso con la calidad en el diagnóstico clínico.
- Duración: Agosto– noviembre 2025
- Modalidad: Presencial
- Instituciones participantes: Asociación Hondureña de Parasitología (AHPA), Hospital Escuela e Instituto Antonio Vidal
- Horario de sesiones: jueves, de 1:00 p. m. a 5:00 p. m.
- Lugar: Servicio de Parasitología “Rina Girard de Kaminsky”, Departamento de Laboratorio Clínico, Hospital Escuela, Tegucigalpa, Honduras.
Componentes del taller
Recursos
Los participantes del taller tendrán acceso a los siguientes recursos de apoyo para facilitar el aprendizaje y la documentación de avances:
- Plataforma The Global Health Network
- The Global Health Network Latinoamérica y el Caribe
- Curso Básico de Malaria de la Plataforma TGHN: https://globalhealthtrainingcentre.tghn.org/elearning/basic-malaria-microscopy/
- Material impreso didáctico con el contenido de cada uno de los temas a desarrollar
- Muestras de heces preservadas en formalina 10% para observación al microscopio y no preservadas para la ejecución de técnicas de laboratorio.
- Láminas con tinciones permanentes para el desarrollo de prácticas de laboratorio:
a) Coloración acidorresistente modificada (ARM): Cryptosporidium spp., Cyclopsora cayetanensis y Cystoisospora belli
b) Coloración tricrómica: variedad de amebas y protozoos flagelados
c) Gota Gruesa y Extendido Fino coloración Giemsa: Plasmodium vivax y Plasmodium falciparum
- Manual de Parasitología. Técnicas para laboratorio de atención primaria en salud y para el diagnóstico de las enfermedades infecciosas desatendidas. Tercera edición.
- Medios auxiliares para el diagnóstico de parásitos intestinales, segunda edición (descarga gratuita en pdf https://www.paho.org/es/documentos/medios-auxiliares-para-diagnostico-parasitosis-intestinales).
- Medios auxiliares para el diagnóstico malaria, segunda edición (descarga gratuita en pdf https://apps.who.int/iris/handle/10665/44264).
- Certificado de Aprobación (nota final de aprobación > 80%) o Participación (para quienes no alcanzan la nota de aprobación).
Temática: Apicomplexa intestinales (Cryptosporidium spp., Cyclopsora cayetanensis y Cystoisospora belli)
Fecha: 21 y 28 de agosto, 2025
Participantes que finalizaron: 12 de 12 inscritos
Total, de aprobados: 8 participantes con nota final mayor o igual a 80%
Nota promedio final: 81.0%
El primer día se realizó una evaluación de conocimientos previos sobre apicomplexas, antes de dar inicio al taller. Acto seguido se impulsó la inscripción a la plataforma TGHN y se motivó a los participantes a dar inicio en el curso de malaria. Se inició con una hora de discusión teórica sobre la biología, epidemiología, presentación clínica y los métodos de diagnóstico en parásitos Apicomplexas Intestinales. Posteriormente, se pasó a la fase práctica, dividendo a los participantes en dos grupos: Grupo 1 se centró en realizar la practica I coloración acido-resistente (ARM), y el Grupo 2 para realizar la practica II, el cual consiste en la observación al microscopio de ooquistes de apicomplexas en láminas positivas teñidas con ARM. El segundo día se realizó la promoción de la plataforma TGHN, una discusión teórica corta de repaso y un ejercicio con cada uno de los participantes para identificar imágenes proyectadas de ooquistes, después se realizaron las dos prácticas de laboratorio intercambiando los roles de los grupos de trabajo. Finalmente, se realizó una evaluación final de conocimientos.

El Dr. Jorge García impartiendo la sesión teórica sobre apicomplexas, explicando los aspectos morfológicos y biológicos clave de este grupo de parásitos a los participantes.
Temática: Amebas y flagelados intestinales
Fecha: 4 ,11 y 18 de septiembre 2025
Participantes que finalizaron: 10 de 11 inscritos
Total, de aprobados: 9 participantes con nota final > a 80%
Nota promedio final: 90.0%
El primer día se inició con una evaluación previa al taller seguido de la promoción de la plataforma TGHN y un recordatorio de tomar el curso de malaria. Se inició con una hora de discusión teórica sobre la biología, epidemiología, presentación clínica y métodos de diagnóstico. Posteriormente, se realizó la práctica de laboratorio I, que consistió en la observación al microscopio de láminas teñidas con coloración Tricrómica Las cuales contenían una diversidad de amebas y flagelados intestinales que ya habían sido previamente identificados, la práctica se centró en la observación de estos protozoos con el objetivo de diferenciar el tipo de núcleo e identificar sus distintas características morfológicas. El segundo día se realizó la promoción de la plataforma TGHN, una discusión teórica corta y se proyectaron videos de Trofozitos de amebas (tanto hematófagas como no hematófagas), para ilustrar su características patógenas y movilidad, junto a la presentación de algunos flagelados. A continuación, se realizó la práctica de laboratorio II: observación al microscopio de muestras de heces preservadas (formalina 10%) y muestras de heces no preservadas (procedentes de la rutina de trabajo diario), con diversidad de amebas y flagelados intestinales con el objetivo de identificar la morfología diferencial. En el tercer día, se realizó la promoción de la plataforma TGHN, una breve discusión teórica y un ejercicio con cada uno de los participantes, el cual cada uno de ellos, debe identificar una ameba o flagelo que se encontraba proyectada. Esto fue seguido por la práctica III, donde se observaron nuevamente muestras de heces preservadas y no preservadas, concluyendo el taller con una evaluación final.: helmintos intestinales (nematodos transmitidos por el suelo y Strongyloides stercoralis)

Participantes del taller realizando actividades prácticas en el laboratorio durante la sesión sobre amebas y flagelados intestinales
Temática: helmintos intestinales (nematodos transmitidos por el suelo y Strongyloides stercoralis)
Fecha: 9 y 16 de octubre, 2025
Participantes que finalizaron: 13 de 14 inscritos
Total, de aprobados: 11 participantes con nota final > a 80%
Nota promedio final: 92%
El primer día se inició con una evaluación previa al taller. Se inició con la promoción de la plataforma TGHN y se hizo recordatorio de tomar y completar el curso de malaria disponible en ella. Se inició con una hora de discusión teórica. Se abordaron temas sobre la biología, epidemiología, presentación clínica y métodos de diagnóstico de geo helmintos; se abarcaron datos desde la perspectiva internacional y aquellos disponibles en el Servicio de Parasitología del Hospital Escuela. Posteriormente, se realizó la práctica de laboratorio; la cual consistió en la observación morfológica de las características de los huevos de helmintos, utilizando muestras preservadas en formalina al 10%. Además, se demostró y se explicó el fundamento de la técnica de concentración Kato-Katz. El segundo día se realizó la promoción de la plataforma TGHN y una discusión teórica sobre la biología, epidemiología, presentación clínica y métodos de diagnóstico para Strongyloides stercoralis, después se realizó la práctica de laboratorio demostración y ejecución del método de Baermann modificado con muestras de heces no preservadas (procedentes de la rutina de trabajo diario). Posteriormente se realizó un ejercicio de identificación de larvas con muestras preservadas en formalina al 10%. Mientras se realizaba la demostración, se enfocaron al microscopio las características morfológicas de larvas rabditoides y filariformes de S. stercolaris y Uncinarias, con el fin de que los participantes puedan identificar las características distintivitas de cada uno de estos helmintos y así poder diferenciar entre ellos. Los participantes rotaron en los microscopios observando las estructuras que componen estos helmintos, dando por concluida la actividad. El taller finalizó con la aplicación de una evaluación.

Sesión teórica del taller sobre geohelmintos y Strongyloides stercoralis, donde se revisaron aspectos clave de biología, epidemiología y diagnóstico antes de las prácticas de laboratorio.
Temática: malaria (Plasmodium vivax y Plasmodium falciparum)
Fecha: 30 de octubre, 6 y 13 de noviembre
Participantes que finalizaron: 10 de 11 inscritos
Total, de aprobados: 7 participantes con una nota final > a 80%
Nota promedio final: 83%
Inicialmente, se procedió con la promoción de la plataforma TGHN, seguida de un recordatorio de completar el curso de malaria. El primer día comienzo con hora y media de discusión teórica centrada en la epidemiología, ciclo de vida, presentaciones clínicas y métodos de diagnóstico. Se detallaron las características morfológicas de Plasmodium vivax y Plasmodium Falciparum; abordando los estadios sexuales y no sexuales, así como también se discutieron la tinción(Giemsa), técnicas y métodos para el diagnóstico de este parasito. Posteriormente se llevó a cabo un ejercicio interactivo con los participantes, mediante la proyección de imágenes de los diferentes estadios de P.vivax y P.falciparum solicitando a los participantes al reconocimiento de su morfología y posible identificación de especie.
Finalmente, se dio comienzo al trabajo práctico, separando a los participantes en dos grupos. El primero se enfocó el reconocimiento morfológico y en las características específicas de P.vivax y P. Falciparum. Dicha práctica se llevó a cabo utilizando laminas previamente confirmadas como positivas y teñidas con Giemsa, se observaron en 100x los diferentes estadios de P.vivax (incluyendo trofozoitos en anillo y maduros, Esquizontes y gametocitos)al igual que en P.falciparum. El segundo grupo se dedicó a la coloración y ejecución de la técnica de extendido fino y gota gruesa. En el segundo día se realizó la promoción de la plataforma TGHN y una discusión sobre las diferencias de las especies P.vivax y P. Falciparum, incluyendo las diferencias morfológicas del parasito y de los eritrocitos infectados. Se describieron los estadios que se encuentran con mayor frecuencia por especie, y como se asocian estos con la sintomatología clínica. En sesión práctica de este día, se intercambiaron los roles de los grupos, los participantes que se dedicaron a la coloración participarían en la identificación morfológica y viceversa.
En el tercer y último día recapitulo brevemente los puntos clave abordados en las sesiones previa, la teoría concluyo con la estimación de la densidad parasitaria y su debido conteo, tanto en gota gruesa como extendido fino, enfatizando en la importancia de esta cuantificación en la evaluación y manejo de la enfermedad. Seguidamente se dio comienzo a la última práctica basada en el conteo de los parásitos tanto en gota gruesa como extendido fino con las láminas que se les fueron entregadas. Para finalizar el taller se realizó una evaluación de conocimientos.

Participantes del taller de malaria realizando la práctica de identificación morfológica de Plasmodium vivax y Plasmodium falciparum en el laboratorio, observando láminas teñidas y aplicando técnicas diagnósticas aprendidas durante la sesión.